技术文献

Cell Metabolism(IF 30.9):油酸/棕榈酸诱导肝细胞(HHL5人胚胎肝细胞系、原代肝细胞、LX-2肝星状细胞)脂肪变性以模拟肝脏脂质堆积
Cell Metabolism(IF 30.9):油酸/棕榈酸诱导肝细胞(HHL5人胚胎肝细胞系、原代肝细胞、LX-2肝星状细胞)脂肪变性以模拟肝脏脂质堆积
在细胞实验部分,研究者综合运用了多种细胞模型来验证机制:使用人胚胎肝细胞系HHL5和原代肝细胞作为脂肪变性肝细胞模型,用于观察DDX49相分离、LIG形成及代谢物刺激实验;同时,采用人肝星状细胞系LX-2和原代肝星状细胞作为纤维化效应细胞模型,通过条件培养基共培养体系,研究肝细胞来源的LIG对肝星状细胞活化的调控作用
2026-04-24
油酸/棕榈酸刺激人肝癌细胞(HepG2)构建NAFLD细胞模型
油酸/棕榈酸刺激人肝癌细胞(HepG2)构建NAFLD细胞模型
本研究采用体内外结合的技术路线系统探究BA的作用机制。在体内,通过高脂高胆固醇饮食联合葡聚糖硫酸钠诱导小鼠NAFLD模型;在体外,则利用油酸(OA)和棕榈酸(PA)混合刺激人肝癌细胞HepG2,构建脂肪变性细胞模型。研究综合运用了分子对接、生化指标检测、组织病理染色(HE、油红O)、荧光染色(尼罗红、ROS)以及蛋白与基因表达分析(Western blot, Real-time PCR)等多种技术,旨在阐明BA是否通过调节p53/GPX4信号轴来抑制铁死亡,从而发挥肝保护作用。
2026-04-17
棕榈酸模拟体内高脂环境诱导小鼠精原细胞损伤引发氧化应激、炎症及细胞凋亡
棕榈酸模拟体内高脂环境诱导小鼠精原细胞损伤引发氧化应激、炎症及细胞凋亡
本研究开展了一系列细胞实验。将GC-1细胞分为对照组、PA单独处理组、BC单独处理组以及PA与BC联合处理组,处理24小时后进行观测。实验内容主要包括:通过CCK-8检测和形态学观察评估细胞活力和形态变化;通过RT-qPCR检测Nfe2l2、Keap1、Hmox1、Nqo1、Gclc、Cat、Gpx4、Lc3b及Sqstm1等基因的转录水平;通过生化法测定细胞内MDA和GSH水平以评估氧化还原状态;最后通过Western blot检测NRF2蛋白的表达量,从而在细胞活力、形态、基因表达和蛋白水平等多个层面,系统揭示了PA与BC联合暴露对精原细胞的协同毒性效应及其潜在的分子机制。
2026-04-07
HepG2脂肪肝细胞模型建立方法
HepG2脂肪肝细胞模型建立方法
在细胞实验方面,研究使用HepG2细胞系,给予250 μmol/L棕榈酸钠联合500 μmol/L油酸钠处理24小时,成功诱导脂肪肝细胞模型。通过给予不同浓度祛湿活血方含药血清及AMPK抑制剂Compound C进行干预,系统考察了祛湿活血方对细胞脂质沉积、炎症反应和氧化应激的影响,并深入探讨了AMPK/SREBP1c信号通路在其中的调控作用。
2026-03-24
Environ. Chem. Ecotoxicol.(IF: 8.2)油酸钠诱导HepG2细胞脂肪变性模型模拟MASLD病理状态
Environ. Chem. Ecotoxicol.(IF: 8.2)油酸钠诱导HepG2细胞脂肪变性模型模拟MASLD病理状态
本文在体外细胞模型中,使用油酸钠作为高脂细胞添加剂处理HepG2细胞,模型模拟MASLD病理状态。油酸钠作为游离脂肪酸可以用来诱导多数细胞的代谢异常、脂代谢紊乱。
2026-03-11
Cardiovascular Diabetology(IF: 10.6)高糖联合棕榈酸钠处理AC16心肌细胞模拟射血分数保留型心衰(HFpEF)代谢应激
Cardiovascular Diabetology(IF: 10.6)高糖联合棕榈酸钠处理AC16心肌细胞模拟射血分数保留型心衰(HFpEF)代谢应激
本研究采用高脂饮食(HFD)联合L-NAME建立HFpEF小鼠模型,通过对比野生型(WT)、全身性GPR91敲除(Gpr91⁻/⁻)型及心肌细胞特异性敲除(Gpr91ᴬᶜᴹ)型小鼠,探究琥珀酸补充的疗效及机制。通过超声心动图、组织学分析和分子检测评估心脏功能与代谢表型;结合心肌转录组测序筛选琥珀酸-GPR91调控的通路;进一步在AC16心肌细胞系和hiPSC来源心脏类器官中验证下游分子机制(如AMPK/NAD⁺通路),并通过Gq抑制剂(YM-254890)和烟酰胺挽救实验,明确琥珀酸-GPR91信号通路的因果调控作用。
2026-03-03
Marine Drugs(JCR Q1;IF 5.4)棕榈酸钠模拟高脂环境诱导肝细胞脂毒性以研究三种新型胶原肽对HepG2高脂损伤的改善作用
Marine Drugs(JCR Q1;IF 5.4)棕榈酸钠模拟高脂环境诱导肝细胞脂毒性以研究三种新型胶原肽对HepG2高脂损伤的改善作用
研究首先通过细胞毒性实验确定肽的安全浓度(≤200 μM)和棕榈酸钠(PANa)造模浓度(350 μM)。随后评估三种肽对PANa损伤的HepG2细胞的保护作用,包括细胞形态、存活率、抗氧化酶活性(CAT、SOD、GSH-Px、MDA)及Nrf2信号通路蛋白表达。
2026-01-29
高脂细胞添加剂对比以及部分品牌存在溶液不澄清、低温析出、常温浑浊、毒性太强以及50℃~60℃加热助溶等技术问题分析
高脂细胞添加剂对比以及部分品牌存在溶液不澄清、低温析出、常温浑浊、毒性太强以及50℃~60℃加热助溶等技术问题分析
本文对比高脂细胞添加剂,分析部分品牌存在的溶液不澄清、低温析出、常温浑浊、毒性太强及加热助溶等技术问题,为科研选型提供参考。
2026-01-15
Oncogenesis(JCR Q1;IF 6.4)游离脂肪酸(FFA)诱导肝癌细胞(Huh7、SK-Hep-1)脂质积累以建立高脂细胞模型
Oncogenesis(JCR Q1;IF 6.4)游离脂肪酸(FFA)诱导肝癌细胞(Huh7、SK-Hep-1)脂质积累以建立高脂细胞模型
细胞水平的功能与机制研究是本文的核心内容。研究采用慢病毒感染技术,成功构建了USP5稳定敲低和过表达的Huh7与SK-Hep-1细胞株。通过CCK-8实验、克隆形成实验及Transwell实验系统评估了细胞的增殖与侵袭转移能力;采用油红O(Oil Red O)与尼罗红(Nile Red)染色并结合脂质组学分析,明确了细胞内脂质积累程度及脂肪酸谱的变化;进一步利用蛋白酶体抑制剂MG132处理、放线菌酮(CHX)蛋白合成抑制追踪实验以及泛素化免疫沉淀等技术,深入阐明了USP5通过去泛素化作用维持FASN蛋白稳定的具体机制。
2026-01-04
Metabolism(IF=11.9)游离脂肪酸(FFA)诱导小鼠肝细胞系(AML12)脂肪变性以建立肝细胞脂毒性模型
Metabolism(IF=11.9)游离脂肪酸(FFA)诱导小鼠肝细胞系(AML12)脂肪变性以建立肝细胞脂毒性模型
细胞实验部分主要使用AML12小鼠肝细胞系及人iPS来源的肝样细胞,通过添加游离脂肪酸(油酸钠与棕榈酸钠混合)诱导脂质堆积,进而观察Imeglimin对脂质沉积、AMPK磷酸化及相关信号通路的影响,并利用Pen2敲除细胞及AMPK抑制剂验证其作用依赖性
2025-12-19
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